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蕈菌多糖的提取、纯化与结构表征

时间:2026-01-27 理论教育 懓樺 版权反馈
【摘要】:发酵滤液测其pH后,经旋转蒸发仪浓缩至原体积的1/3,加浓缩液四倍体积的无水乙醇,保持乙醇浓度在70%以上。图9.1 柽柳核纤孔菌发酵多糖经Sepharose CL-6B柱后多糖和蛋白的测定结果[●多糖;〇蛋白质]取精多糖1mg,用溴化钾压片后进行红外分析。如图谱9.2所示,它具有多糖的共同吸收峰,在2925cm-1有峰值表明有其吸收较弱是一种分子中C—H键的弯曲振动。图9.2 柽柳核纤孔菌发酵多糖的红外光谱图图9.3 柽柳核纤孔菌发酵多糖的核磁共振氢谱

柽柳核纤孔菌:基因号HM050416,郑州轻工业学院微生物学实验室保藏;柽柳核纤孔菌胞外多糖发酵条件:温度25℃,碳源为蔗糖,氮源为胰蛋白胨,pH为8;蔗糖浓度为64.090g/L,胰蛋白胨含量为5.240g/L,装液量50mL(250mL三角瓶),转速为150r/min,发酵周期为12d。

柽柳核纤孔菌发酵结束后,发酵液经SHB-3循环多用真空泵真空抽滤,得到菌丝体及发酵滤液,菌丝体经65℃,24h干燥至恒重,冷却、称重,得到干燥菌丝备用。发酵滤液测其pH后,经旋转蒸发仪浓缩至原体积的1/3,加浓缩液四倍体积的无水乙醇,保持乙醇浓度在70%以上。4℃静置过夜,10000r/min冷冻离心10min,得到沉淀加适量蒸馏水溶解后,加入1/3的氯仿/正丁醇(5∶ 1),磁力搅拌器剧烈搅拌30min;静置10min后,取上层水相。共重复三次。水相经浓缩后,再次加4倍无水乙醇,4℃沉降一夜。10000r/min离心10min,取沉淀,然后用Sevag法对粗多糖进行脱蛋白处理得粗多糖。

称取粗多糖100mg,用10mL 0.2mol/L NaCl缓冲液溶解,离心,上清液过0.45μm的水膜,取5mL上Sepharose CL-6B柱,以0.2mol/L NaCl缓冲液洗脱,流速为0.6mL/min,缓冲液洗脱并分管收集,145滴/管,用硫酸-苯酚法对各管多糖含量进行检测。所得到的组分分别收集起来,用旋转蒸发仪浓缩至50mL,然后透析(透析袋分子质量8000~14000)除去NaCl,将透析后的溶液冷冻干燥,得到精多糖。

用硫酸-苯酚法检测多糖,用紫外-可见分光光度计在波长490nm处检测多糖含量,在波长280nm处直接检测蛋白,得到1个组分,以管号为横坐标以多糖吸光度为纵坐标用SigmaPlot软件作图,结果如图9.1所示。

图9.1 柽柳核纤孔菌发酵多糖经Sepharose CL-6B柱后多糖和蛋白的测定结果[●多糖(EPS);〇蛋白质]

取精多糖1mg,用溴化钾(KBr)压片后进行红外(IR)分析。(https://www.xing528.com)

取层析后多糖50mg左右分别装入核磁管中,加入0.5mL重水,在核磁共振仪上经行1H-NMR光谱分析。

如图谱9.2所示,它具有多糖的共同吸收峰,在2925cm-1有峰值表明有其吸收较弱是一种分子中C—H键的弯曲振动。在3414cm-1有一特征峰,1457cm-1和1386cm-1处有峰值表明有偕二甲基。在2361.2cm-1、2335.9cm-1处有吸收峰,应为C ═N或C ═C伸缩振动,O—H的伸缩振动在3600~3200cm-1,在3421cm-1出现一宽峰表明该糖中存在O—H;在1419cm-1,1051cm-1处有吸收峰,应为C—O伸缩振动引起的。从1652cm-1和1051cm-1处有吸收峰,说明有羧基存在。

1H-NMR以HDO峰4.69mg/kg为内标,13C-NMR以TMS(四甲基硅烷)峰为0.00mg/kg为内标进行核磁共振检测。结果如图9.3所示,柽柳核纤孔菌发酵多糖的1H-NMR见δ4.92为α-D-葡萄糖的端基氢信号,δ4.86为β-甘露糖端基氢信号,在1.18处有氢信号,在此处可以证明有羧基的存在,更加证明了其为酸性多糖。

图9.2 柽柳核纤孔菌发酵多糖的红外光谱图

图9.3 柽柳核纤孔菌发酵多糖的核磁共振氢谱

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