1.测序数据处理
对每组样品双端测序(paired-end)的reads进行拼接(FLASh,V1.2.7,http://ccb.jhu.edu/software/FLASH/),得到原始Tags数据(Raw Tags);根据Qiime(V1.9.0,http://qiime.org/scripts/split_libraries_fastq.html)提供的Tags质量控制流程,对Raw Tags进行截取、长度过滤、嵌合体(chimera)去除(Usearch,v8.0,http://drive5.com/uparse/)等处理后得到高质有效的Tags数据(effective Tags)。
2.OTU聚类和物种注释
采用Qiime软件对所有Effective Tags进行cd-hit去除冗余序列,以序列差异水平在0.03(即相似度97%)水平上将序列聚类成OTU(Operational Taxonomic Units ),同时选取OTU中出现频数最高的代表性序列,去除只含有一条序列的OTU(Singleton),对OTU代表序列进行物种注释(Greengenes,http://greengenes.secondgenome.com/)。以样品中数据量最少的为标准,对OTU表中各样品的数据进行均一化处理,均一化处理后的数据进一步用作后续Alpha和Beta多样性分析。
3.Alpha多样性分析
通过样品的Alpha多样性分析可以反映样品内的微生物群落的丰富度和多样性,进而反映菌群结构的变化。本研究采用Qiime软件(Version 1.9.0)对Chao1、Shannon、Simpson等Alpha多样性指数进行计算并绘制稀释曲线,计算公式如下:
式中 SChao1、HShannon、DSimpson——Chao1、Shannon和Simpson指数;
Sobs——观测到的OTU数;(www.xing528.com)
N1——只含有一条序列的OTU数;
N2——只含有两条序列的OTU数;
N——抽样中出现的所有序列数;
Ni——含有i条序列的OTU数。
4.Beta多样性分析
Beta多样性反映不同群落间物种组成沿环境梯度的差异性。根据OTU表和系统发育树,采用Qiime软件生成Unifrac距离矩阵,绘制基于加权Unifrac距离的主坐标分析(principal coordinates analysis,PCoA)图,统计分析参照文献[200]。
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