滤纸酶活力英文为Filter paper activity,因此可简写为FPA。它的定义为:1g固体酶(或1mL液体酶),在(50±0.1)℃、指定pH条件下(酸性纤维素酶pH4.8,中性纤维素酶pH6.0),1h水解滤纸底物,产生出相当于1mg葡萄糖的还原糖量,为1个酶活力单位,以U/g固体酶(或U/mL液体酶)表示。在碱性、煮沸条件下,3,5-二硝基水杨酸(DNS试剂)与还原糖发生显色反应,其颜色的深浅与还原糖(以葡萄糖计)含量成正比。通过在540nm测其吸光度,可得到还原糖的量,进而计算出纤维素酶的活力。
1.实验试剂及仪器
① DNS试剂:置3,5-二硝基水杨酸(10±0.1)g于600mL水中,逐渐加入10g氢氧化钠,在50℃水浴中(磁力)搅拌溶解,再依次加入200g酒石酸钾钠、2g重蒸苯酚和5g无水亚硫酸钠,待全部溶解并澄清后,冷却至室温,用水定容至1000mL,过滤。贮存于棕色试剂瓶中,于暗处放置7d后使用。
② 柠檬酸缓冲液,0.05mol/L,pH4.8(适用于酸性纤维素酶):将4.83g一水柠檬酸溶于约750mL水中,搅拌情况下加入7.94g柠檬酸三钠,用水定容至1000mL。调解溶液pH到(4.8±0.05)备用。可用pH4.8乙酸缓冲溶液替代。
③ pH4.8乙酸缓冲溶液:将8.16g三水乙酸钠溶于约750mL水中,加入2.31mL乙酸,用水定容到1000mL。调解溶液的pH到(4.8±0.05)备用。
④ 磷酸缓冲液,0.1mol/L pH6.0(适用于中性纤维素酶):分别称取121.0g一水磷酸二氢钠和21.89g二水磷酸氢二钠,将其溶解在10L去离子水中。调解溶液的pH到(6±0.05)备用。溶液在室温下可保存一个月。
⑤ 葡萄糖标准贮备溶液(10mg/mL):称取于(103±2)℃下烘干至恒重的无水葡萄糖1g,精确至0.1mg,用水溶解并定容至100mL。
⑥ 葡萄糖标准使用溶液:分别吸取葡萄糖标准贮备溶液0.00、1.00、1.50、2.00、2.50、3.00、3.50mL于10mL容量瓶中,用水定容至10mL,盖塞,摇匀备用。系列浓度可以根据需要自行调整。
⑦ 快速定性滤纸(杭州新华一号滤纸):直径15cm,每批滤纸使用前用标准酶加以校正。
⑧ 除普通实验室仪器外,还应有:a.分光光度计;b.酸度计,精度±0.01pH;c.恒温水浴(50±0.1)℃;d.分析天平,感量0.0001g;e.磁力搅拌器;f.秒表或定时钟;g.沸水浴,可用800W电炉和高脚烧杯、搪瓷量杯或其他容器组成;h.具塞刻度试管,25mL。
2.实验步骤
(1)绘制标准曲线
按表9-1规定的量,分别吸取葡萄糖标准使用溶液、缓冲溶液和DNS试剂于各管中(每管号平行作3个样),混匀。
表9-1 葡萄糖标准曲线
将标准管同时置于沸水浴中,反应10min。取出,迅速冷却至室温,用水定容至25mL,盖塞,混匀。用10mm比色杯,在分光光度计波长540nm处测量吸光度。以葡萄糖量为横坐标,以吸光度为纵坐标,绘制标准曲线,获得线形回归方程,线形回归系数应在0.9990以上时方可使用(否则须重做)。
(2)待测酶液的准备
称取固体酶样1g(精确至0.0001g)或吸取液体酶样1mL(精确至0.01mL),用水溶解,磁力搅拌混匀,准确稀释定容(使试样液与空白液的吸光度之差恰好落在0.3~0.4范围内),放置10min,待测。
(3)滤纸条的准备
将待用滤纸放入硅胶干燥器中平衡24h,然后制成宽1cm、质量为(50±0.5)mg的滤纸条,放置10min,折成M形,备用。
(4)样品的测定(www.xing528.com)
① 取四支25mL刻度具塞试管(一支空白管,三支样品管)。
② 将折成M形的滤纸条,分别放入每支试管的底部(沿1cm方向竖直放入)。
③ 分别向4支管中,准确加入相应pH的缓冲溶液1.50mL。
④ 分别准确加入稀释好的待测酶液0.50mL于3支样品管中(空白管不加),使管内溶液浸没滤纸,盖塞。
⑤ 将4支试管同时置于(50±0.1)℃水浴中,准确计时,反应60min,取出。
⑥ 立即准确地向各管中加入DNS试剂3.0mL。再于空白管中准确加入稀释好的待测酶液0.50mL,摇匀。将四支管同时放入沸水浴中,加热10min,取出,迅速冷却至室温,加水定容至25mL,摇匀。
⑦ 以空白管(对照液)调仪器零点,在分光光度计波长540nm下,用10mm比色杯,分别测量3支平行管中样液的吸光度,取平均值。以吸光度平均值查标准曲线或用线性回归方程求出还原糖的含量。
3.结果计算
FPA酶活力按式(9-1)或式(9-2)计算:
或
式中 X1——样品的滤纸酶活力,U/mL [式(9-1)]或U/g [式(9-2)]
t——酶反应时间,取值1,h
mA——根据吸光度在标准曲线上查得或计算出的还原糖量,mg
V0——待测液体酶体积,取值1,mL
V1——检测用的稀释酶液体积,取值0.5,mL
V——稀释酶液总体积,mL
m——待测固体酶质量,取值1,g
同一试样两次测试结果的绝对差值,不得超过算术平均值的10%。
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